何，發(fā)色團或熒光團在單位時間內(nèi)產(chǎn)生的激發(fā)-發(fā)射循環(huán)次數(shù)都不能超過一定數(shù)量。因此，信號不能通過增加功率來增強，因為它實際上已經(jīng)飽和。克服這第②個限制的一個邏輯方法是并行化激勵過程，并使用一種可以同時從樣本的多個點激勵和獲取信號的方案。傳統(tǒng)的寬視場照明正是這樣做的。然而對于非線性光學(xué)方法，如雙光子熒光顯微鏡，寬視場照明不是一個實用的選擇，因為現(xiàn)有的超快脈沖激光源不能提供足夠的功率來同時激發(fā)整個視場。雖然超快激光不能照亮整個領(lǐng)域，但它們的能量足以同時照亮許多感興趣的點。困難在于有效地將光線重新分配到只需要關(guān)注的區(qū)域。純相位型SLM非常適合這項任務(wù)，它們可以動態(tài)地調(diào)整可用于成像和光刺激的活動波束的數(shù)量 ...

M有利于探測熒光團的分子環(huán)境，以了解光強測量無法闡明的熒光團行為。圖1中概述了時域和頻域的FLIM測量，并在下面進行詳細描述。簡單地說，時域熒光壽命測量使用短脈沖光進行激發(fā)(相對于樣品的壽命較短)，然后直接(即通過門控檢測或脈沖采樣)或使用時間分辨電子技術(shù)記錄熒光分子的指數(shù)衰減如圖1(a)及1(b)。另外，頻域技術(shù)也可以測量熒光壽命如圖1(c)和1(d)。這里，激勵是連續(xù)的，隨著時間的推移，振幅調(diào)制為正弦波。熒光信號的相位和振幅隨激發(fā)波的變化而變化。通過繪制在一定調(diào)制頻率范圍內(nèi)的相位變化，可以看到熒光團的相位延遲和振幅調(diào)制如圖1(d)。得到的熒光正弦信號可以在頻域解調(diào)，以量化熒光強度指數(shù)衰減引 ...

熒光是分子(熒光團)通過發(fā)射可檢測的光子(時間尺度為)衰減到基態(tài)的輻射過程。熒光發(fā)射發(fā)生在激發(fā)電子能級最低的位置(S1)。這種來自最低激發(fā)電子能級的強制發(fā)射確保了發(fā)射光譜保持不變，并且與激發(fā)波長無關(guān)。由于振動弛豫和內(nèi)部轉(zhuǎn)換中的能量損失，發(fā)射的熒光光子的能量較低(即發(fā)射發(fā)生在比激發(fā)更長的波長)。這種發(fā)射波長的位移稱為斯托克斯位移。另一個主要發(fā)光過程，磷光，通過被稱為系統(tǒng)間交叉(ISC)的過程發(fā)生在激發(fā)時電子能量躍遷到三元態(tài)能級(T1;T2;:::;Tn)。三重態(tài)的電子具有平行自旋，這些電子躍遷是“自旋禁止的”，通過發(fā)射一個磷光光子或ISC反轉(zhuǎn)和發(fā)射一個延遲的熒光光子，導(dǎo)致向地能級的緩慢躍遷。磷光 ...

能夠充分激發(fā)熒光團。在比較單束和五束成像模式的實驗中，我們將DOE保留在原位，并在兩種實驗中生成5個小波束，它的區(qū)別是在單束實驗中，我們簡單地在中間成像平面放置一個簡單的虹膜隔膜，作為四個小波束路徑上的屏障，只允許一個通過)。在這些條件下，在800 nm處，單個中心光束對樣品的功率為24 mW，而所有五束光的功率之和對樣品的功率為108 mW，其他四束的平均功率為21 mW，每個都在平均值的5%以內(nèi)。檢鏡掃描與單光束雙光子光柵掃描成像相同，并使用放大光電倍增管(PMT)進行檢測(PMT: H7422-P40 Hamamatsu, Bridgewater, NJ, USA;放大器:信號恢復(fù)AME ...

記目的開發(fā)的熒光團顯示高達倍的振動響應(yīng)的出色增強。結(jié)果是這種熒光探針可以通過CRS工藝在亞微米濃度下檢測到。這是重要的，因為它開辟了在多標(biāo)簽樣品中映射不同探針的可能性，不同探針的數(shù)量受限于拉曼線的帶寬，而不是熒光的帶寬。由于檢測通道之間的串?dāng)_，在熒光顯微鏡中使用四個以上探針標(biāo)記樣品具有挑戰(zhàn)性，而在共振增強SRS成像中，多探針標(biāo)記可以擴展到數(shù)十個不同的探針。就多重成像而言，這種能力是一個巨大的勝利，因為許多細胞生物學(xué)研究需要多個分子參與者的可視化來揭示細胞內(nèi)的過程和途徑。通過共振增強SRS提供的多路復(fù)用能力可以進一步推動到更低的探針濃度。通過讓探針選擇性僅由SRS激發(fā)過程決定，原則上可以放寬檢測 ...

alk是由于熒光團(如FITC和Cy3)的激發(fā)和發(fā)射光譜的波長范圍有所交集。即使Cy3熒光團是較合適被綠色(~550 nm)光激發(fā)，它同樣也能被青色(475 nm)光激發(fā)到足夠的程度，在圖2中很容易被檢測到。通過將四帶通多邊分束器和發(fā)射濾光片改為單帶通二向色鏡和發(fā)射濾光片來消除crosstalk信號，從而在檢測系統(tǒng)的發(fā)射側(cè)實現(xiàn)了更精確的阻擋。這種解決方案是一種妥協(xié)，因為它以速度為代價提高了分辨率。當(dāng)然在熒光成像時，我們需要盡可能的去減小bleedthrough以及crosstalk的影響選擇熒光染料時，應(yīng)盡量選擇發(fā)射光譜帶寬較窄的同時使用多種熒光染料時，應(yīng)盡量選擇光譜間沒有重疊的，以免產(chǎn)生信號 ...

等光譜相似的熒光團起到激發(fā)作用。同樣也有針對細胞遺傳學(xué)檢測實驗中熒光原位雜交（Fluorescence in situ hybridization，F(xiàn)ISH）對475-600nm區(qū)域進行輸出的SOLA FISH型號。以及提供zui廣泛光譜覆蓋范圍，用于激發(fā)熒光團（Cy7和ICG）近紅外輸出的LED白光光源SOLA V-nIR 和 U-nIR。滿足您各種所需波長的需求。Lumencor的LED白光光源擁有精確控制的快速調(diào)節(jié)，可以對光源的輸出功率進行調(diào)節(jié)。LED光源所產(chǎn)生的熱輻射較低，不會對于微流控反應(yīng)器產(chǎn)生過多的熱量影響，從而保證反應(yīng)的精度和穩(wěn)定性。SOLA系列的LED白光光源耗電量較低，即開即 ...

，特別設(shè)計的熒光團優(yōu)先在腫瘤中積聚。當(dāng)用適當(dāng)波長的光激發(fā)時，這些材料發(fā)出熒光，以對比的偽色實時顯示腫瘤和其他結(jié)構(gòu)。這支持更完整的腫瘤切除和更好的患者預(yù)后。大多數(shù)FGS熒光團被650-810 nm光譜范圍內(nèi)的單色光激發(fā)。那些具有近紅外照明的熒光特別有效，因為更大的穿透深度可以顯示地下生長。此外，一些臨床批準(zhǔn)的染料被紫色(405 nm)和青色(490 nm)輸出激發(fā)。由于短波長的穿透深度有限，這些材料通常應(yīng)用于表面病變。傳統(tǒng)上，熒光成像系統(tǒng)包含激光，這可能是昂貴的，復(fù)雜的，而且往往喜怒無常。光纖耦合LED在這種應(yīng)用中的優(yōu)勢首先是堅固性——當(dāng)生命受到威脅時，系統(tǒng)不會失敗。LED足夠堅固，可以承受在醫(yī) ...

長設(shè)置為目標(biāo)熒光團常規(guī)激發(fā)所需波長的兩倍。在且僅在束腰處，聚焦的峰值光強超過雙光子激發(fā)的閾值。這提供了固有的3D分辨率，并消除了對有損耗的共聚焦孔的需要。然而，這兩種技術(shù)都受到實際成像中的需要取舍的負面影響，例如以捕獲代謝過程所需的幀率在組織內(nèi)部進行更深層次成像的能力。此外，由于顯微鏡光學(xué)器件的像差，或者更隱蔽地，由樣品組織本身的光學(xué)性質(zhì)，分辨率可能會受到負面影響。Sandstr?m解釋說，將聲光偏轉(zhuǎn)器(AOD)運用在共聚焦顯微鏡中，代替?zhèn)鹘y(tǒng)的振鏡掃描激光來解決這些限制。在聲光結(jié)構(gòu)中，聲波被應(yīng)用于某些類型的光學(xué)透明材料，如晶體，引起材料折射率的變化。這種折射率的變化使穿過材料的光發(fā)生偏轉(zhuǎn)。通過 ...

需要成像多種熒光團的問題。我們期待Lumencor提供照明，以支持我們非常苛刻和廣泛的顯微鏡成像需求。來自尼康影像中心的評價無疑是對我們極大的肯定，Lumencor光源能夠很好的適配包括尼康在內(nèi)主流的顯微鏡，容易集成到您的顯微系統(tǒng)中，滿足您生物研究方面的各種需求。您可以從尼康的官網(wǎng)上看到https://www.microscope.healthcare.nikon.com/bioimaging-centers/nic-and-cofe/uc-san-diegoUCSD的尼康影像中心的大FOV寬場系統(tǒng)、高內(nèi)涵分析（HCA）系統(tǒng)、N-STORM/TIRF/CSU-X1 超分辨率和轉(zhuǎn)盤式共聚焦系統(tǒng)均 ...